植物生物学及实验
实验室名称：普通生物学实验室
一、适用专业
生物工程专业
二、实验目的及任务
植物生物学是生物工程专业的一门专业基础课，是一门实践性很强的课程。通过实验教学使学生了解显微镜的构造，掌握显微镜的使用的方法、临时装片技术和生物绘图方法；植物细胞的结构、植物组织特点，以及各种器官的结构和功能；使学生在课堂上所学的知识得到验证，加深对理论知识的理解；培养学生的动手能力、思考问题和分析问题的能力。
三、主要仪器设备
仪器名称 数量（台、件、套）
1．生物显微镜 37
2．奥林巴斯系统显微镜 1
3. 连续变倍体视显微镜 37
4．光照培养箱 1
5．超净工作台 1
6．多媒体投影仪设备 1
7．电冰箱 1
8．恒温培养箱 2
9、生化培养箱 1
10．电热干燥箱 2
11．台式离心机 5
12．电子天平 2
13．自动磨刀机 1
14．手摇切片机 3
15．可调试封闭电炉 4
16．恒温水浴锅 8
17．手提式压力灭菌器 1
18．切片机 1
19．电热套 4
20．数码相 1
21．数码摄像机 1
22．数据处理系统 1
23． 植物切片
24．植物标本采集工具
25．人工气候箱 2
四、主要教材与参考书
教 材：《植物生物学实验教程》汪矛主编，科学出版社，2003.9
参考书：《植物生物学实验指导》杨继主编，高等教育出版社，2000.6
《植物生物学实验指导》王英主编，高等教育出版社，2001.6
五、考试形式
本课程采用平时操作技能评分、实验科学态度、实验报告、期末考试考查相结合的考核方法，按一定比例计算总评成绩。
六、实验项目与要求
序号 | 项 目 名 称 | 学时 | 要求 | 实 验 目 的 | 仪器数/人 | 类型 |
1 |
显微镜使用及细胞结构的观察 |
3 |
必开 | 了解显微镜的构造及保养方法，掌握显微镜使用方法熟练掌握临时装片方法、简单生物绘图技术和细胞结构。 |
1 |
验证 |
2
| 植物细胞有丝分裂观察 | 3 | 必开 | 掌握临时压片观察染色体的方法和植物细胞有丝分裂各时期的主要特点。 |
1 |
综合 |
3 |
植物组织观察 |
3 |
必开 | 了解不同植物组织在体内的分布，掌握徒手切片技术和不同组织的结构特点。 |
1 |
验证 |
4 |
孢子植物观察（Ⅰ） |
3 |
选开 | 通过对藻类、菌类代表植物的观察，掌握两大类群的特征和代表植物的特点。 |
1
|
验证 |
5 |
孢子植物观察（Ⅱ） |
3 |
选开 | 通过对苔藓类、蕨类代表植物的观察，掌握两大类群的特征和代表植物的特点。 |
1 |
验证 |
6 | 根的观察 | 3 | 必开 | 了解被子植物根的形态，掌握被子植物根的结构。 | 1 | 验证 |
7 | 茎的观察 | 3 | 必开 | 了解被子植物茎的形态，掌握被子植物茎的结构。 | 1 | 验证 |
8 | 叶的观察 | 3 | 必开 | 了解被子植物的叶形态，掌握被子植物叶的结构。 | 1 | 验证 |
9
| 被子植物花的观察 | 3 | 选开 | 了解花类型，掌握花的形态结构。 | 1 | 验证 |
10 | 种子结构观察和种子生命力的测定 | 3 | 必开 | 了解种子的形态，掌握种子的结构和生命力的测定方法 | 1 | 综合 |
11 | 植物组织水势、渗透势 | 3 | 选开 | 了解植物水势与渗透势的关系，掌握植物组织水势和渗透势测定的基本方法。
|
2 |
综合 |
12 | 植物灰份分析与鉴定 | 3 | 选开 | 了解植物体内所含的常见大量元素和微量元素，学会鉴定植物体内各种灰份的方法。 |
2 |
综合 |
13 | 植物呼吸强度的测定 | 3 | 选开 | 了解植物呼吸作用的生理过程和原理，掌握测定植物呼吸强度的基本本方法。 |
1 |
综合 |
14 | 植物检索表的使用和编制 | 3 | 选开 | 了解植物检索表的编制原理，掌握检索表的编制和使用方法。 | 1 | 验证 |
15 | 孢子植物野外观察 | 3 | 选开 | 了解本地孢子植物的种类和生境，掌握采集方法。 |
1 |
综合 |
16 | 种子植物野外观察 | 3 | 选开 | 了解本地种子植物的种类和生境，掌握采集方法。 |
1 |
综合 |
17 | 植物综合实验 | 3-5 | 选开 | 学生根据学过的知识设计 一个实验 | 小组 | 综合 |
课程名称：动物生物学及实验
一、适用专业
生物工程专业。
二、实验目的与任务
动物生物学实验的任务是通过实验，使学生将在动物生物学理论课中学习的基础理论和基本知识加以验证，并掌握生物动物实验的基本操作技能，为将来从事实际工作做必要的准备。
三、实验配套的主要仪器设备几台（套）数
冰箱 1台
恒温培养箱 2台
恒温水浴锅 4台
投影仪 1台
显微镜 35台，
解剖镜 35台
放大镜 35个，
解剖器 35套，
解剖盘 35个，
直 尺 35把
四、主要教材及参考书
主要教材：《动物生物学实验指导》黄诗笺等，北京：高等教育出版社，2001.
参考书目：《普通动物学实验指导》刘凌云等，北京：高等教育出版社，1998.
五、考核形式
本课程采用平时操作技能评分、实验科学态度、实验报告、期末考试考查相结合的考核方法，按一定比例计算总评成绩。
六、实验项目与要求
序号 | 实验项目名称 | 时数 | 必开 选开 | 每套仪器人数 | 目的要求 | 实验类型 |
1 | 细胞制片观察、细胞大小测量 | 3 | 选开 | 1 | 学习动物细胞标本的涂片制作法及测量细胞大小的方法。 | 综合 |
2 | 动物组织切片观察 | 3 | 必开 | 1 | 掌握动物四大基本组织的结构特点及其结构与机能的密切关系。 |
验证
|
3 | 蛙的早期胚胎发育 | 3 | 必开 | 1 | 了解蛙早期胚胎发育中主要阶段的形态构成特点。 |
验证 |
4 | 原生（及腔肠）动物观察 | 3 | 必开 | 1 | 认识原生及腔肠动物代表种类的形态特点和结构组成。 |
验证 |
5 | 扁形、环节及头索动物观察实验 | 3 | 选开 | 1 | 了解扁形、环节及头索动物代表种类的形态特点和结构组成。 |
验证 |
6 | 虾解剖观察 | 3 | 选开 | 1 | 了解节肢动物的一般解剖方法和主要结构特征。 | 验证 |
7 | 参观动物园 | 3 | 必开 | 1 | 了解动物界各类群的主要组成种类。 | 参观 |
8 | 观看昆虫纲教学录象 | 3 | 选开 | 1 | 了解昆虫的生活习性。 | 录象 |
9 | 观看鱼纲教学录象 | 3 | 选开 | 1 | 了解鱼类的主要种类组成及生活方式。 | 录象 |
10 | 鲫鱼解剖观察 | 3 | 必开 | 1 | 通过对鲫鱼外形及内部构造的解剖观察，了解硬骨鱼类的主要特征及其适应于水生生活的形态结构特征。 |
验证 |
11 | 观看爬行纲教学录象 | 3 | 选开 | 1 | 了解爬行类的主要种类组成及生活习性。 | 录象 |
12 | 观看哺乳纲教学录象 | 3 | 选开 | 1 | 了解哺乳类的主要种类组成及生活习性。 | 录象 |
课程名称：生物化学实验
一、适用专业
生物工程（本科）
二、实验目的与任务
通过本课程（实验）的教学，使学生掌握生物化学实验的基本操作及实验技术，掌握生物大分子的分离纯化、定性、定量、化学性质、生物活性的鉴定，掌握和了解组织代谢和能量释放转变和贮存与代谢调节过程中的代谢产物和间产物的定性、定量分析鉴定实验。
三、实验配套的主要仪器设备几台（套）数
电泳仪 3台 普通离心机 8台
电子天平 4台 752分光光度计 5台
微量加样器 20套 玻璃仪器 40套
恒温干燥箱 2台 冰箱 1台
水浴箱(锅) 4台 酸度PH仪 2台
玻璃匀浆搅拌机 4台 电泳槽
四、主要教材及参考书
参考教材：《基础生物化学实验》王秀奇等，北京：高等教育出版社，1999（第二版）
参考书：《生物化学实验》陈钧辉等，北京：科学出版社，2003（第三版）
《生物化学技术原理及其应用》赵永芳，北京：科学出版社，2002
《生化实验方法和技术》张龙翔，张庭芳，李令媛，北京：高等教育出版社，1997
五、考核形式
本课程采用平时操作技能评分、实验科学态度、实验报告相结合的考核方法，按一定比例评定成绩。
六、实验项目与要求
序号 | 实验项目名称 | 时数 | 必开 选开 | 每套仪器人数 | 目的要求 | 实验类型 |
1 | 生物化学实验基本知识 | 2 | 选开 | 2 | 生物化学实验室守则、基本操作、常用仪器的使用、常用试剂的配制 等。 | 验证 |
2 | 蛋白质及氨基酸的呈色反应 | 3 | 必开 | 2 | 1． 了解构成蛋白质的基本结构单位及主要连接方式 2． 掌握蛋白质和氨基酸的呈色反应 3. 学习几种常用的鉴定蛋白质和氨基酸的方法 | 验证 |
3 | 蛋白质的等电点测定和沉淀反应 | 3 | 选开 | 2 | 1. 了解蛋白质的两性解离性质，学习测定蛋白质等电点的一种方法 2. 加深对蛋白质胶体溶液稳定因素的认识 3. 了解沉淀蛋白质的几种方法、实用意义及蛋白质变性与沉淀的关系 | 验证 |
4 | 总氮量的测定——凯氏定氮法 | 4 | 选开 | 2 | 1. 掌握凯氏定氮法测定蛋白质含量的原理和方法 2. 学会使用凯氏定氮仪 | 综合 |
5 | 氨基酸的分离鉴定——纸层析 | 3 | 必开 | 2 | 了解并掌握氨基酸纸 层析的原理和方法 | 验证 |
6 | 酪蛋白的等电点测定——等电聚焦电泳 | 5 | 选开 | 2 | 1. 了解蛋白质的两性解离性质 2. 掌握用等电聚焦电泳法测定蛋白质等电点的原理和方法 | 验证 |
7 | 血清蛋白的醋酸纤维薄膜电泳 | 3 | 必开 | 2 | 1. 学习醋酸纤维薄膜电泳的操作 2. 了解电泳技术的一般原理 | 验证 |
8 | 肝细胞中核酸的分离和鉴定 | 6 | 选开 | 2 | 1. 学习从肝细胞中分离核酸的方法 2. 掌握测定核酸的方法 | 综合 |
9 | 酪蛋白的制备 | 3 | 必开 | 2 | 学习从牛乳中制备酪 蛋白的方法和原理 | 综合 |
10 | 酵母核糖核酸的分离及组分鉴定 | 4 | 选开 | 2 | 1. 学习用酸性乙醇沉淀核糖核酸的方法从酵母中分离核糖核酸 2. 掌握鉴定核酸组分的方法和操作 | 综合 |
11 | 菜花中核酸的分离 | 4 | 选开 | 2 | 初步掌握从菜花中分 离核酸的方法 | 综合 |
12 | 甲醛滴定法测定氨基氮 | 3 | 必开 | 2 | 掌握甲醛滴定法测定氨基酸含量的原理和操作要点 | 验证 |
13 | 酶的特性 | 3 | 必开 | 2 | 加深对酶的性质的认识 | 验证 |
14 | 糖的颜色反应和还原作用 | 3 | 必开 | 2 | 1. 了解糖类某些颜色反应的原理 2. 学习用糖的颜色反应鉴别糖类的方法 3. 学习几种常用的鉴定糖类还原性的方法和原理 | 验证 |
15 | 核酸的定量测定 | 3 | 选开 | 2 | 1. 掌握定量核酸的原理和方法 2. 学习紫外分光光度计的使用 | 验证 |
16 | 维生素C的定量测定 | 4 | 选开 | 2 | 1. 掌握定量维生素C的原理和方法 2. 加深理解维生素C的理化性质 | 验证 |
17 | 脂肪碘值的测定 | 3 | 选开 | 2 | 1. 学习测定脂肪碘值得原理和方法 2. 学习了解碘值及其测定意义 | 综合 |
18 | 3，5-二硝基水杨酸比色定糖 | 3 | 选开 | 2 | 1. 掌握3，5-二硝基水杨酸比色定糖的原理和方法 2. 学习分光光度计的使用 | 综合 |
19 | 底物浓度对酶促反应的影响 | 3 | 选开 | 2 | 1. 了解底物浓度对酶促反应速度的影响 2. 学习测定米氏常数的原理和方法 | 综合 |
20 | 肌糖元的酵解作用 | 3 | 选开 | 2 | 1. 学习检定糖酵解作用的原理和方法 2. 了解糖酵解作用在糖代谢过程中的地位及生理意义 | 验证 |
21 | 聚合酶链式反应 | 4 | 选开 | 2 | 1. 掌握聚合酶链式反应的原理和操作 2. 了解聚合酶链式反应的应用 3. 学习PCR仪的使用 | 综合 |
22 | 总糖的测定——蒽酮比色法 | 3 | 选开 |
| 1. 学习蒽酮比色定糖法的原理和方法 2. 学习752分光光度计的原理和操作方法 | 综合 |
23 | 血液中转氨酶活力的测定 | 4 | 选开 | 2 | 1. 了解转氨酶在代谢过程中的重要作用 2. 学习转氨酶活力测定的原理和方法 | 综合 |
课程名称：微生物学及实验
一、适用专业
本大纲适用于2004级生物工程专业。
二、实验目的与任务
通过学习显微镜油镜的使用和维护；细菌的染色；放线菌和霉菌的形态观察；细菌大小和数量的测定；培养基的配制、灭菌和微生物的纯培养及培养特征的观察；环境条件对微生物生长的影响；微生物的生理生化反应；等内容。使学生熟练掌握纯培养技术和显微技术理论及实验操作；掌握微生物的形态结构和识别特征、遗传变异途径、生理生化性质等检测方法，在实践中独立运用。
三、实验配套的主要仪器设备几台（套）数
超净台2台，生化培养箱1台，光照培养箱1台，电热培养箱1台，二氧化碳培养箱1台，厌氧培养箱1台，台式低速离心机5台，台式高速离心机2台，台式高速离心机转头6套，台式高速冷冻离心机1台，恒温空气摇床2台，全温恒温空气摇床2台，全自动高压蒸汽灭菌锅 1台，手提式压力蒸汽灭菌器2台，电热恒温鼓风干燥箱2台，旋转蒸发器2台，酶标仪1台，电泳仪3台，转移电泳仪1台，电泳槽（水平）6套，电泳槽（垂直）2套，转移电泳槽2套， 脱色摇床1套， 紫外透射仪1台，电子分析天平（不同规格）9台，单道可调式手动移液器4套，12道可调式手动移液器1，蔡氏滤器1台，磁力加热搅拌器5台，旋涡混合器2台，微型旋涡混合器5台，超纯水机1台，电热蒸馏水器1台，手提式紫外检测仪1台，不间断电源2套，液氮罐4个，微波炉2台，制冰机1台，低温药品冰箱2台，粘度计1台，冰柜（-10℃～-40℃）1台，冰箱2台，空调2台，凝胶真空干燥器1套 ，圆盘电泳槽1套，蛋白质回收槽1套，多用制胶器1套，数显恒温水浴锅恒温水浴器2台，隔水式恒温培养箱1台，冷冻水浴恒温振荡器1台，PH计3台，旋转蒸发器1台，超声波破碎仪1台，超声波清洗机1台，恒流泵1台，真空泵1台，电炉子10个，测微尺30套。
四、主要教材及参考书
《微生物学实验》沈萍，高等教育出版社，1999年6月第三版
《微生物学实验》赵斌、何绍江，科学出版社，2002年8月第一版
五、考核形式
本课程采用平时操作技能评分、实验科学态度、实验报告、期末考试考查相结合的考核方法，按一定比例计算总评成绩。
六、实验项目与要求
序号 | 实验项目名称 | 时数 | 必开 选开 | 每套仪器人数 | 目的要求 | 实验类型 |
1 | 普通光学显微镜的使用和细菌革兰氏染色 | 3 |
必开
| 2 | 掌握油镜的原理和使用方法；掌握细菌革兰氏染色的原理和方法，学会在油镜下观察细胞和识别细菌的形态特征。 | 验证 |
2 | 微生物培养基的配置和灭菌 | 3 | 必开
| 2 | 掌握培养基配制的原理、方法，灭菌的种类、方法。 | 验证 |
3 | 微生物的纯培养 （微生物的培养特征） | 3 | 必开 | 2 | 掌握常用的分离、纯化微生物的基本操作技术，了解不同微生物在斜面，半固体和液体培养基上的生长特征。 |
综合 |
4 | 放线菌、霉菌及真菌的形态观察 | 3 | 必开
| 2 | 学习观察放线菌、霉菌几真菌形态的基本方法，掌握其特征。 |
验证 |
5 | 环境因素对微生物的影响 | 3 | 必开 | 2 | 了解化学因素，温度，生物因素和渗透压对微生物生长的影响及实验方法。 |
验证 |
6 | 微生物细胞大小和数量的测定 | 3 |
选开
| 2 | 学习微生物大小和数量测定的种类及方法，掌握测微尺测定微生物大小的方法和微生物血细胞计数板计数法。 |
验证 |
7 | 水的细菌学检验 | 3 | 选开 | 2 | 学会水样的采取和细 菌测定方法。 | 验证 |
8 | 食品中微生物的观察 | 3 | 选开 | 2 | 了解食品中微生物学 检测方法和质量判断标准。 | 验证 |
9 | 微生物遗传实验 | 3 | 选开 | 2 | 了解微生物变异途径及特点，学会常用的检测方法。 | 验证 |
10 | 微生物生理生化反应观察（一） | 3 | 选开 | 2 | 了解微生物大分子水解试验的原理和方法，学会证明不同微生物对各种有机大分子有不同的水解能力。 |
验证 |
11 | 微生物生理生化反应观察（二） | 3 | 选开 | 2 | 了解糖发酵的原理和掌握通过糖发酵鉴别不同微生物的方法。 |
验证 |
12 | 酶联免疫吸附实验（ELISA） | 3 | 选开 | 2 | 了解ELISA的基本原理和操作方法，学会HBsAg和抗-HBsAg的ELISA检测方法。 |
综合 |
13 | 噬菌体的分离与纯化 | 3 | 选开 | 2 | 学习从自然环境中分 离和纯化噬菌体的基本原理和方法，了解噬 菌斑的形态。 |
综合 |
14 | 细菌致病力的检测 | 3 | 选开 | 2 | 验证细菌的致病能力，了解其检测方法。 | 验证 |
15 | 微生物的分类鉴定 | 6 | 选开 | 2 | 自行设计实验方案鉴定未知微生物的种属特性。 | 设计 |
课程名称：细胞生物学及实验
一、适用专业
生物工程专业
二、实验目的与任务
通过实验使学生掌握细胞生物学的基本方法及操作技能，加深对理论的认识，培养学生独立完成实验能力和科学严谨的工作作风，为将来从事教学科研生产工作打下个良好的基础。
三、实验配套的主要仪器设备几台（套）数
光学显微镜35
暗视野显微镜2
相差显微镜1
荧光显微镜2
倒置显微镜1
二氧化碳培养箱2
冰箱2
天平2
超净工作台2
普通台式离心机4
高速离心机1
搅拌器4
匀浆器2
混匀器2
摇床4
高压灭菌锅2
双蒸水器1
高温干燥箱2
光照培养箱2
移液器60
恒温摇床2
四、主要教材及参考书
教材：《细胞生物学实验教程》王金发主编，科学出版社，2003.
参考书：《细胞生物学实验》杨汉民主编，高等教育出版社，1997.
五、考核形式
本课程采用平时操作技能评分、实验科学态度、实验报告、期末考试考查相结合的考核方法，按一定比例计算总评成绩。
六、实验项目与要求
序号 | 实验项目名称 | 时数 | 必开 选开 | 每套仪器人数 | 目的要求 | 实验类型 |
1 | 特殊光学显微镜的原理与使用 | 3 | 必开 | 30 | 了解暗视野显微镜、相差显微镜和荧光显微镜的工作原理和使用方法 | 验证 |
2 | 细胞的形态、计数与显微测量 | 3 | 必开 | 1 | 观察各种不同细胞的形态及大小，学会测微尺的使用方法，了解显微测量原理 | 验证 |
3 | 线绿体活体染色和观察 | 3 | 必开 | 1 | 学生掌握线粒体观察方法，学习线粒体的形态和功能 | 综合 |
4 | 叶绿体的分离与荧光观察 | 3 | 选开 | 1 | 通过植物细胞叶绿体的分离，了解细胞器分离的一般原理和方法 | 综合 |
5 | 核酸的显示与观察 | 3 | 选开 | 1 | 学习和掌握原位显示细胞内核酸的一般原理和方法，了解细胞内核酸的一般分布状况 | 验证 |
6 | 酸性蛋白与碱性蛋白的显示与观察 | 3 | 选开 | 1 | 学习和掌握原位显示细胞内酸性蛋白和碱性蛋白的一般原理和方法，了解细胞内蛋白质的一般分布状况 | 验证 |
7 | 过氧化氢酶的显示与观察 | 3 | 选开 | 1 | 学习和掌握原位显示细胞内过氧化氢酶的一般原理和方法，了解细胞内过氧化氢酶的一般分布状况。 | 验证 |
8 | 酸性磷酸酶的显示方法 | 3 | 选开 | 1 | 学习和掌握原位显示细胞内酸性磷酸酶的一般原理和方法，了解细胞内酸性磷酸酶的一般分布状况。 | 验证 |
9 | 淀粉的显示与观察 | 3 | 选开 | 1 | 学习和掌握原位显示细胞内淀粉的一般原理和方法，了解细胞内淀粉的一般分布状况 | 验证 |
10 | 减数分裂压片标本制备与观察 | 3 | 选开 | 1 | 学习减数分裂压片标本制备方法，观察减数分裂过程，掌握减数分裂过程的分期和特征 | 综合 |
11 | 细胞吞噬活动的观察 | 3 | 选开 | 1 | 认识和理解细胞吞噬活动 | 验证 |
12 | 细胞骨架的显示与观察 | 3 | 选开 | 1 | 掌握细胞骨架的光镜标本的制备方法 | 验证 |
14 | 动物染色体标本的制备与观察
| 3 | 选开 | 1 | 初步掌握动物骨髓染色体标本制备基本过程，了解操作步骤的原理 | 综合 |
15 | 动物细胞微丝束的光学显微镜观察 | 3 | 选开 | 1 | 掌握考马斯亮蓝R250染动物细胞胞质微丝的方法 | 验证 |
16 | 胞间连丝的观察 | 3 | 选开 | 1 | 掌握植物胞间连丝的位置 | 验证 |
17 | 细胞膜的通透性 | 3 | 选开 | 1 | 观察细胞膜的通透性及各类物质进入细胞的速度 | 验证 |
18 | 细胞凝集反应 | 3 | 选开 | 1 | 学习植物凝集素的提取方法，观察红细胞凝集反应 | 综合 |
课程名称：遗传学实验
一、适用专业
本大纲适用于生物工程专业。
二、实验目的与任务
遗传学实验课有助于巩固、加深理解遗传学理论内容、验证理论规律、提高分析问题、解决问题和动手能力。通过学习要求学生掌握所做实验的基本原理及实验过程中操作的关键步骤，能独立完成类似的实验内容，初步养成实验、科研的良好习惯。
三、实验配套的主要仪器设备几台（套）数
显微镜50台，超净台5台，生化培养箱2台，光照培养箱2台，电热培养箱2台，二氧化碳培养箱1台，台式低速离心机4台，台式高速离心机2台，台式高速离心机转头2套，台式高速冷冻离心机及转头1台，数显水浴恒温震荡器1台，全自动高压蒸汽灭菌锅2台，手提式压力蒸汽灭菌器3台，电热恒温鼓风干燥箱2台，电泳仪8台，转移电泳仪1台，电泳槽（水平H4；DY-34）各5套，电泳槽（垂直）10套，转移电泳槽2套，紫外透射仪2台，电子分析天平2台，单道可调式手动移液器5套，12道可调式手动移液器5套，磁力加热搅拌器5台，超纯水机1台，电热蒸馏水器1台，手提式紫外检测仪2台，不间断电源2套，液氮罐5个，微波炉2台，制冰机2台，药品保存箱1台，冰柜（-10℃～-40℃）1台，冰箱2台，空调2台，真空抽气干燥器及泵4套，蛋白质回收槽2套，多用制胶器5套，数显恒温水浴锅5台，数显电子恒温水浴锅2台，PH计5台，超声波破碎仪1台，数字显微镜1台，实体解剖镜30台，欧林帕斯显微镜1台，低温冰箱1台，凝胶成像系统1套，低温循环器5台，微型缝纫机1台，双波长扫描仪1台，玻璃匀浆器25套，组织搅碎器1台，目镜、物镜测微尺各25套，暗室1个，动物饲养室1个（配置空调）1个，不间断电源2套，实验材料种植园地2亩等。
四、主要教材及参考书
教材：《遗传学实验教程》王建波，方呈祥，鄢慧民等，武汉大学出版社，2004.2
参考书：《遗传学实验》（第二版）刘祖洞，江绍慧，高等教育出版社，1999.6
《遗传学实习指导》吴冬和译，农业出版社，1987.4
五、考核形式
本课程采用平时操作技能评分、实验科学态度、实验报告相结合的考核方法，按一定比例评定成绩。
六、实验开出率
实验开出率应100%。
七、实验项目与要求
序号 | 实验项目名称 | 时数 | 必开 选开 | 每套仪器人数 | 目的要求 | 实验类型 |
1 | 细胞的减数分裂 | 3 | 选开 | 1 | 掌握制片方法，了解减数分裂过程中染色体行为。 | 验证 |
2 | 果蝇形态、生活史观察 | 3 | 必开 | 1 | 了解果蝇生活史，准确识别各类果蝇及雌雄果蝇特征。 | 验证 |
3 | 果蝇的唾腺染色体的观察 | 3 | 必开 | 1 | 学会唾腺染色体标本制作方法，掌握其形态特征。 | 验证 |
4 | 染色体组型分析 | 3 | 选开 | 1 | 掌握染色体组型分析方法及其意义。 | 验证 |
5 | 果蝇的单因子杂交实验 | 3 | 必开 | 2 | 验证分离规律，掌握果蝇的杂交方法及统计处理方法。 | 验证 |
6 | 果蝇的双因子杂交实验 | 3 | 必开 | 2 | 验证自由组合规律，掌握果蝇杂交及统计处理方法。 | 验证 |
7 | 果蝇的伴性遗传 | 3 | 必开 | 2 | 验证伴性遗传规律，掌握果 蝇杂交及统计处理方法。 | 验证 |
8 | 粗糙链孢霉的杂交 | 3 | 选开 | 1 | 了解顺序四分体的遗传学分析方法，进行基因定位。 | 验证 |
9 | 数量性状的测定 | 3 | 必开 | 2 | 掌握数量性状的测定方法及其统计学检测的应用。 | 验证 |
10 | 人工诱发多倍体生物 | 3 | 必开 | 1 | 了解人工诱发多倍体的原理和方法，掌握秋水仙素诱发多倍体的一般方法。 | 综合 |
11 | 作物有性杂交 | 3 | 选开 | 2 | 掌握农作物有性杂交方法。 | 验证 |
12 | 小白鼠骨髓染色体制片技术 | 6 | 选开 | 2 | 掌握动物染色体标本的制作原理和技术。 | 验证 |
13 | 果蝇的三点测验 | 3 | 选开 | 2 | 掌握三点测交的方法、原理及应用意义。 | 验证 |
14 | X-性染色质制片观察 | 3 | 选开 | 1 | 了解X—性染色质的观察方法及意义 | 验证 |
15 | 诱变剂的微核测试 | 3 | 选开 | 1 | 了解微核测定方法及意义，掌握诱变剂的种类和特点。 | 验证 |
16 | DNA的孚尔根反应及染色体畸变的观察 | 3 | 选开 | 1 | 掌握DNA的孚尔根反应染色方法及用途及染色体畸变的类型、特征和识别。 | 验证 |
17 | 人的外周血淋巴细胞培养 | 6 | 选开 | 3 | 掌握人体微量血液体外培养制备染色体标本的方法。 | 验证 |
18 | 动、植物同工酶技术 | 6 | 选开 | 3 | 掌握同工酶的提取分离技术，了解该技术在遗传学研究中的作用。 | 综合 |
19 | 植物DNA的提取与 分离 | 6 | 选开 | 3 | 掌握DNA的提取和分离的原理、方法及其在遗传学研究中的作用。 | 综合 |
20 | 细菌的转导 | 6 | 选开 | 3 | 掌握噬菌体效价的测定方法 | 验证 |
课程名称：生物工程综合实验
生物工程本科专业
二、实验目的与任务
本课程是一门专业综合实验课程，综合了细胞工程技术、基因工程技术等方面的实验内容，在注重专业基础性和可操作性的前提下突出先进性和系统性，加强教学内容的选择性。通过本课程的学习和实践，要求学生掌握基因工程技术、细胞工程技术及相关领域的实验原理和方法，提高分析问题和解决问题的能力，开拓创新能力，为从事生物技术与工程以及相关领域的科学研究打下基础。
三、实验配套的主要仪器设备几台（套）数
1、低温水浴锅4台
2、冰箱2台
3、超净工作台3台
4、恒温摇床6台
5、生化培养箱3台
6、二氧化碳培养箱1台
7、二氧化碳钢瓶1台
8、蒸水器1台
9、纯水器1台
10、真空泵1台
11、高压灭菌锅1台
12、厌氧培养箱1台
13、恒温培养箱2台
14、发酵罐3台
15、抽滤装置15套
16、光电分光光度计2台
17、冷冻高速离心机1台
18、层析柱装置15套
19、蛋白质电泳装置15套
20、普通显微镜30台
21、电脑3台
22、PCR仪2台
四、主要教材及参考书
《生物工程综合实验》（分《基因工程》、《细胞工程》和《发酵工程》3个分册），浙江大学生命科学学院编写，内部印刷。
五、考核形式
本课程采用平时操作技能评分、实验科学态度、实验报告、期末考试考查相结合的考核方法，按一定比例计算总评成绩。
六、其他有关说明
本实验系生物工程专业的主干实验课程，拟定在开课后的暑假安排一个短学期（15天左右）完成。其中计划课时118，为了强化学生实践能力的培养，安排计划外课时10，合计128课时。
八、实验项目与要求
1．基因工程部分（42课时）
序号 | 实验项目名称 | 时数 | 必开选开 | 每套仪器人数 | 目的要求 | 实验 类型 |
1 | 培养基的配制、菌种活化、细菌培养及菌种保存 | 6 | 必开 | 6 | 通过本实验掌握基因工程用细菌的培养与活化 | 综合 |
2 | 细菌感受态细胞的制备 | 6 | 必开 | 4 | 掌握和理解感受态细胞的制备 | 综合 |
3 | 质粒DNA的提取 | 6 | 必开 | 4 | 掌握DNA的提取技术 | 综合 |
4 | 目的DNA片段制备-PCR | 4 | 选开 | 4 | 掌握PCR技术，制备DNA片段 | 综合 |
5 | 载体DNA大片段的制备 | 4 | 选开 | 4 | 掌握载体的制备 | 综合 |
6 | 目的DNA片段与载体大片段的连接 | 4 | 选开 | 6 | 掌握DNA重组技术 | 综合 |
7 | 连接产物的细菌细胞转化 | 6 | 选开 | 6 | 掌握细菌转化技术 | 综合 |
8 | 重组DNA的筛选与鉴定 | 6 | 选开 | 6 | 理解和熟悉筛选和鉴定方法 | 综合 |
9 | 目的基因的诱导表达及表达产物的SDS-PAGE检测 | 8 | 选开 | 6 | 熟悉基因表达产物的检测 | 综合 |
10 | 表达产物的ELASA分析 | 8 | 选开 | 6 | 熟悉ELASA分析方法 | 综合 |
*必开18课时，并在上述选开实验中选开24课时，合计42课时。
2．细胞工程部分（38课时）
序号 | 实验项目名称 | 时数 | 必开 选开 | 每套仪器人数 | 目的要求 | 实验 类型 |
1 | 动物细胞培养实验器材的准备 | 4 | 必开 | 3 | 掌握动物细胞培养的前期准备工作 | 验证 |
2 | 动物细胞培养液的制备 | 6 | 必开 | 3 | 掌握细胞培养液的制备技术 | 演示 |
3 | 动物细胞的原代培养 | 8 | 必开 | 6 | 掌握细胞的原代培养技术 | 综合 |
4 | 动物细胞的传代培养 | 8 | 选开 | 6 | 熟悉和理解传代细胞的培养 | 验证 |
5 | 培养细胞的形态观察及死活测定 | 4 | 选开 | 6 | 细胞形态观察和死活鉴定方法 | 验证 |
6 | 饲养层细胞的制备 | 4 | 选开 | 6 | 学会滋养层细胞的制备技术 | 验证 |
7 | 培养细胞染色体制备与分带技术 | 8 | 选开 | 6 | 掌握细胞染色技术 | 综合 |
8 | 细胞的融合实验 | 8 | 选开 | 3 | 了解细胞融合的一般操作程序及方法，学习细菌原生质体的制备及融合技术 | 综合 |
9 | 单克隆抗体的制备实验 | 10 | 选开 | 3 | 掌握制备单克隆抗体的原理及其操作 | 综合 |
10 | 培养细胞的冷冻保存与复苏 | 4 | 选开 | 3 | 熟悉细胞的冷冻与复苏技术 | 验证 |
11 | 培养细胞及染色体的拍摄 | 4 | 选开 | 6 | 掌握细胞的照相技术 | 演示 |
*必开18课时，并在上述选开实验中选开20课时，合计38课时
3.发酵工程部分（48课时）
序号 | 实验项目名称 | 时数 | 必开 选开 | 每套仪器人数 | 目的要求 | 实验 类型 |
1 | 啤酒发酵 | 16 | 必开 | 15人 | 掌握厌氧发酵的基本原理及操作步骤 | 综合 |
2 | 味精发酵 | 16 | 必开 | 15人 | 掌握味精发酵的基本原理和操作步骤 | 综合 |
3 | 红曲菌发酵 | 16 | 必开 | 15人 | 掌握红曲菌发酵的基本原理和操作步骤 |
综合 |
*三个实验48课时必开。
课程名称：组织培养实验
一、适用专业
生物工程专业。
二、实验目的与任务
了解植物组织培养实验仪器性能和使用方法及植物组织培养的操作程序，了解培养基的化学组成；掌握常用培养基母液及培养基的制备方法；掌握灭菌技术、外植体表面消毒技术和无菌操作技术。掌握茎尖切割及茎尖培养方法，了解通过茎尖培养获得无毒苗的原理；掌握通过茎段培养进行植物组培快繁的原理和方法；掌握种子胚的剥离方法和胚培养的基本过程；掌握植物花药花粉培养获得单倍体植株的方法；理解愈伤组织的诱导与分化；掌握无菌苗的生根及驯化技术；了解原生质体培养的基本步骤和方法。
三、实验配套的主要仪器设备台（套）数
仪器名称 数量（台、套）
1．超净工作台 12
2．光照培养箱 5
3．电冰箱3
4．恒温培养箱2
5．电热干燥箱2
6．台式离心机1
7．高速台式离心机1
8．托盘扭力天平4
9．电子天平（0.0001、0.001、0.01、0.1）4
10．可调式电炉5
11．电热恒温水浴锅5
12．高温高压灭菌锅5
13．低温冰箱（-200C） 1
14．酸度计 5
15．生物显微镜 5
16．荧光倒置显微镜 2
17．系统相差显微镜 2
18．微量移液器（10、100、1000 µl各一只） 3
19．显微照相设备 1
20．暗室设备 1
21．组织培养室中的培养架 15
22．微波炉 1
四、主要教材及参考书
《植物组织培养》王蒂主编，中国农业大学出版社，2004
《植物组织培养与工厂化育苗》崔德才等主编，化学工业出版社，2003
《花卉组织培养与工厂化生产》刘敏著，地质出版社，2002
《植物细胞组织培养》刘庆昌等主编，中国农业大学出版社，2003
五、考核形式
本课程采用平时操作技能评分、实验科学态度、实验报告、期末考试考查相结合的考核方法，按一定比例计算总评成绩。
六、实验项目与要求
序号 | 实验项目名称 | 时数 | 必开选开 | 每套仪器人数 | 目的要求 | 实验 类型 |
1 | 培养基母液配置 | 3 | 必开 | 5 | 掌握组织培养用母液培养基配方及配置方法与程序 | 验证 |
2 | 培养基的配置及灭菌 | 3 | 必开 | 5 | 掌握培养基配制与灭菌的方法与过程 | 验证 |
3 | 愈伤组织培养 | 3 | 必开 | 5 | 掌握愈伤组织的培养方法与步骤 | 综合 |
4 | 茎尖培养 | 4 | 必开 | 5 | 掌握茎尖组织培养的方法与步骤 | 验证 |
5 | 茎段培养 | 4 | 必开 | 5 | 掌握茎端组织的培养方法与步骤 | 验证 |
6 | 花粉花药培养 | 3 | 选开 | 5 | 掌握花药组织的培养方法与步骤 | 验证 |
7 | 胚胎培养 | 4 | 选开 | 5 | 掌握植物胚胎组织的培养方法与步骤 | 验证 |
8 | 原生质体培养 | 3 | 选开 | 5 | 掌握植物原生质体的培养方法与步骤 | 综合 |
9 | 无菌苗生根及驯化技术 | 3 | 选开 | 6 | 掌握无菌苗生根及驯化技术 | 验证 |